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新型自組裝多肽水凝膠對成骨細胞前體細胞作用的體外研究
瀏覽量:612 | 2024/5/14 16:07:23


摘要:目的 觀察新型自組裝肽TRSAWmx水凝膠對在體外小鼠成骨細胞前體細胞MC3T3-E1細胞粘附效果、增殖能力及成骨分化能力的影響。 方法 通過原子力顯微鏡觀察新型水凝膠的自組裝性能;以倒置顯微鏡對貼壁細胞計數(shù),比較不同材料細胞的粘附;以CCK-8檢測和評價不同材料上細胞的增殖;通過激光共聚焦顯微鏡觀察細胞在材料表面的生長;茜素紅-S染色觀察鈣結(jié)節(jié)形成;檢測材料上培養(yǎng)的細胞堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)活性以及細胞ALP、骨鈣蛋白(osteocalcin,OCN)、血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)等基因的表達。結(jié)果 TRSAWmx能自組裝成納米纖維結(jié)構(gòu);在接種30、60、90 min時,TRSAWmx組細胞粘附數(shù)明顯高于空白組(P<0.05);3、5、7 d 時TRSAWmx組細胞有著更佳的增殖活力(P<0.05);在成骨誘導培養(yǎng)3、7、14 d時,TRSAWmx組ALP活性明顯高于RADA16-Ⅰ組(P<0.05);培養(yǎng)14 d后,TRSAWmx組茜素紅-S染色可見鈣結(jié)節(jié)形成多,成骨相關基因ALP、OCN、VEGF表達水平更高(P<0.05)。 結(jié)論 新型自組裝多肽納米水凝膠TRSAWmx在體外能有效提高MC3T3-E1細胞粘附、增殖和成骨分化能力。


目前臨床上應用的合成骨替代材料,如羥基磷灰石、陶瓷材料等,存在不利于細胞粘附以及生物相容性差等缺點[1]。為了解決上述的問題,需要新的材料來對其表面進行修飾或是替換,水凝膠材料是很好的選擇。RADA16-Ⅰ由16肽氨基酸組成,是自組裝多肽水凝膠的代表,其能在水相離子或生理鹽溶液觸發(fā)下,分子水平組裝成β折疊,并往復形成互補離子鍵,最終組裝成納米纖維,其纖維直徑10~20 nm,孔徑5~200 nm,含水量大于99%[2, 3, 4]。研究表明,水凝膠結(jié)構(gòu)能夠模擬細胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM)及其微環(huán)境,為細胞提供良好的體外生長環(huán)境,有利于細胞的粘附、增殖和分化[5];但是,目前作為支架材料的水凝膠缺乏促進成骨分化的能力。Osteostatin(Thr-Arg-Ser-Ala-Trp)是甲狀旁腺類激素相關蛋白(PTHrP)C末端結(jié)構(gòu)域PTHrP(107~111)五肽片段,能夠介導PTH/PTHrP受體非相關性受體,在體外促進成骨細胞生長和分化[6, 7, 8]。此外,Osteostatin在骨缺損兔體內(nèi)能促進骨再生[9, 10]。本研究通過利用Osteostatin片段對傳統(tǒng)RADA16-Ⅰ進行修飾,期望得到兼顧粘附和促成骨相關性能的自組裝多肽納米水凝膠材料。


1 材料與方法


1.1 實驗材料及主要試劑

MC3T3-E1 Subclone 14小鼠成骨細胞前體細胞(ATCC),多肽RADA16-Ⅰ(AcN-RADARADARADA-RADA-CONH2,相對分子質(zhì)量為1 671.76)、RADA16/TRSAW(相對分子質(zhì)量為2 387.54)和TRASW(相對分子質(zhì)量為619.58),α-MEM培養(yǎng)基,胎牛血清、0.25%胰蛋白酶-0.04% EDTA (Gibco公司),14 mm圓形蓋玻片(NEST公司),CCK-8檢測試劑盒(同仁公司),堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)檢測試劑盒(南京建成),茜素紅-S(Sigma公司),羅丹明鬼筆環(huán)肽,DAPI(碧云天公司),反轉(zhuǎn)錄試劑盒及實時熒光定量PCR試劑盒(TaKaRa公司)。


1.2 實驗方法

1.2.1 通過肽固相合成法[11]

將Osteostatin與 RADA16-Ⅰ C末端相連,合成自組裝多肽RADA16-TRSAW (AcN-RADARADARADARADA-GG-TRSAW-CONH2) 肽粉。自組裝多肽母液的制備向肽粉(每10 毫克分裝)內(nèi)加入1 mL無菌超純水,移液槍吹打混勻后,超聲波清洗機室溫超聲處理30 min去除溶液粘性,得到1%(質(zhì)量體積分數(shù))的多肽母液。取RADA16-Ⅰ和RADA16-TRSAW母液等體積混合,得到1%(質(zhì)量體積分數(shù))TRSAWmx母液。


1.2.2 原子力顯微鏡(AFM)觀察自組裝多肽的纖維結(jié)構(gòu)

用超純水分別稀釋TRSAW、RADA16-Ⅰ、RADA16-TRSAW和TRSAWmx母液,得到0.5‰(質(zhì)量體積分數(shù))的稀釋液,超聲波清洗機室溫超聲處理30 min。取不同多肽稀釋液各5 μL分別滴加到清潔的圓形云母片上,靜置15 s后,用100 μL超純水沿液滴邊緣沖洗3次。30 ℃室溫靜置,待云母片自然干燥 后,AFM進行觀察。AFM參數(shù)設置為輕敲模式,掃描區(qū)域為2 μm×2 μm,掃描頻率是1.0 Hz;掃描探針(Model:Arrow UHFAuD)參數(shù):彈性系數(shù)(k)為6(1.5~21.0)N/m,材質(zhì)Si,無涂層,尖端半徑為(10±2)nm。


1.2.3 自組裝多肽水凝膠的制作和MC3T3-E1細胞接種

分別將1%(質(zhì)量體積分數(shù))RADA16-Ⅰ和TRSAWmx母液與20%(質(zhì)量體積分數(shù))無菌蔗糖溶液按體積比1 ∶1混合,制成0.5%水凝膠工作液。取14 mm 圓形清潔蓋玻片置于24孔培養(yǎng)板內(nèi),向每張蓋玻片上分別滴加100 μL工作液。沿每孔內(nèi)壁,緩慢加入含10%胎牛血清+1%雙抗+50 μg/mL抗敗血酸+ 10 mmol/L β-甘油磷酸鈉的α-MEM成骨培養(yǎng)液,培養(yǎng)板置于37 ℃、5%CO2的孵箱中靜置1 h。MC3T3-E1細胞常規(guī)消化離心后,成骨培養(yǎng)液制成5×104個/mL的單細胞懸液,待凝膠固化成型后,吸凈孔內(nèi)培養(yǎng)基,每孔接種1 mL MC3T3-E1細胞懸液于37 ℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng),隔天換液。


1.2.4 MC3T3-E1細胞在自組裝多肽水凝膠的粘附性能

分別向24孔板中放入14 mm圓形蓋玻片,并滴加RADA16-Ⅰ和TRSAWmx工作液并使其成膠。在空白蓋玻片、RADA16-Ⅰ水凝膠、TRSAWmx水凝膠上滴加1 mL MC3T3-E1細胞懸液,分別在第10、30、60、90分鐘吸凈孔內(nèi)培養(yǎng)基,PBS清洗1次,以除去未粘附的細胞,隨機選取視野對細胞進行計數(shù)。


1.2.5 CCK-8檢測細胞增殖情況
在96孔板內(nèi),滴加RADA16-Ⅰ和TRSAWmx工作液各50 μL/孔,培養(yǎng)板置于37 ℃、5% CO2的孵箱中靜置1 h成膠后,分別在空白孔、RADA16-Ⅰ水凝膠、TRSAWmx水凝膠上滴加100 μL 密度為5×104/mL 的MC3T3-E1細胞懸液。每天換液,在培養(yǎng)的1、3、5、7 d,吸去孔中培養(yǎng)基,按每10 ∶1的比例混合成骨培養(yǎng)液和CCK-8試劑,每孔加入100 μL CCK-8混合液,培養(yǎng)板置于37 ℃、5% CO2的孵箱中孵育1 h后,以酶標儀在450 nm處測D(450)值。

1.2.6 激光共聚焦顯微鏡觀察MC3T3-E1細胞在水凝膠表面的生長


細胞在水凝膠中培養(yǎng)3、7、14 d后,吸凈孔內(nèi)培養(yǎng)基,PBS清洗3次,4%多聚甲醛固定30 min,用PBS清洗3次,0.2%Triton X-100室溫通透10 min,PBS清洗3次,加入5% BSA封閉1 h,隨后PBS清洗3次,加入配置好的羅丹明 -鬼筆環(huán)肽(5 U/mL) 工作液,室溫避光孵育30 min。用PBS清洗3次, 10 μg/mL的DAPI染液浸沒樣本,室溫避光孵育10 min。PBS清洗3次,封片后,激光共聚焦熒光顯微鏡拍照。


1.2.7 ALP活性檢測

細胞在水凝膠中培養(yǎng)3、7 d和14 d后,吸凈孔內(nèi)的培養(yǎng)基,PBS清洗2次,每孔加入1%Triton X-100(100 μL)反復吹打,顯微鏡觀察細胞破碎。嚴格按照堿性磷酸酶試劑盒說明在96孔板內(nèi)進行加樣,以酶聯(lián)免疫檢測儀在520 nm處測定D(520),同時用BCA法測定蛋白濃度,并計算ALP的活力。


1.2.8 茜素紅-S染色

細胞在水凝膠中誘導培養(yǎng)14 d后,吸凈孔內(nèi)的培養(yǎng)基,PBS清洗2次,4%多聚甲 醛固定20 min后,PBS清洗3次,加入茜素紅-S染液室溫下染色10 min,PBS清洗殘留染液,隨機取視野拍照。


1.2.9 RT-PCR
在6孔細胞培養(yǎng)板中分別用RADA16-Ⅰ和TRSAWmx工作液成膠,在空白孔、RADA16-Ⅰ水凝膠、TRSAWmx水凝膠上加入3 mL 1×105/mL的MC3T3-E1細胞懸液。培養(yǎng)板置于37 ℃、5%CO2的孵箱中,在培養(yǎng)第14天后,吸凈培養(yǎng)基,PBS清洗3次,隨后加入TRIzol提取RNA,各取1 μL mRNA逆轉(zhuǎn)錄獲得cDNA。隨后根據(jù)TaKaRa公司逆轉(zhuǎn)錄反應步驟,進行RT-PCR反應。β-actin、ALP、 骨鈣蛋白(osteocalcin,OCN)、血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)引物序列見表 1。使用2-△△Ct對基因相對表達量進行計算。

1.3 統(tǒng)計學處理

使用SPSS 14.0 統(tǒng)計軟件進行單因素方差分析,結(jié)果以x±s表示。


2 結(jié)果


2.1 原子力顯微鏡觀察不同材料的納米結(jié)構(gòu)
原子力顯微鏡下分別觀察RADA16-Ⅰ 、RADA16-TRSAW、TRSAW和TRASWmx 4組短肽的納米結(jié)構(gòu),TRSAW呈云絮狀,無法形成納米纖維狀結(jié)構(gòu)。RADA16-TRSAW自組裝成粗細不規(guī)則的斑片狀納米纖維,長徑為(523.7±142.9)nm,纖維之間未連接搭載,表明功能片段的加入會影響RADA16-Ⅰ β折疊形成,從而影響多肽自組裝成長的納米纖維。但是,將RADA16-Ⅰ與RADA16-TRSAW按1 ∶1比例混合后得到的TRSAWmx纖維長徑為(810.2±96.7)nm,直徑為(17.6±2.1)nm;RADA16-Ⅰ纖維長徑為(847.7±87.8)nm,直徑為(12.8±1.7)nm。TRSAWmx納米纖維直徑大于RADA16-Ⅰ(P<0.05)。兩者均能形成長的納米纖維(圖 1)。

2.2 不同時相點MC3T3-E1細胞在不同材料表面的粘附情況
計數(shù)后得到的細胞個數(shù),各組數(shù)據(jù)經(jīng)過統(tǒng)計學處理10 min時,空白組與RADA16-Ⅰ組比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05,圖 2);30、60 min和90 min時,空白組分別與RADA16-Ⅰ組和TRSAWmx組比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),RADA16-Ⅰ組與TRSAWmx組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

2.3 不同時相點MC3T3-E1細胞在不同材料表面的增殖及生長形態(tài)變化
CCK-8檢測細胞增殖結(jié)果如圖 3所示,培養(yǎng)1 d時,空白組與RADA16-Ⅰ和TRSAWmx組比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),RADA16-Ⅰ組與TRSAWmx組差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);第3、5、7天各組間差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

激光共聚焦顯微鏡觀察細胞生長形態(tài)如圖 4所示,MC3T3-E1細胞分別接種于不同材料表面誘導分化培養(yǎng)3、7 d和14 d后,各組中細胞骨架纖維沿細胞長軸分布,連續(xù)排列,各時間點TRSAWmx組細胞數(shù)目較空白組和RADA16-Ⅰ組均有明顯增加(P<0.05)。

2.4 不同時相點MC3T3-E1細胞在不同材料表面的ALP活性檢測和茜素紅-S染色結(jié)果
ALP試劑盒檢測各時間點ALP活性,在3、7、14 d時各組間差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05,圖 5)。這提示TRSAWmx上培 養(yǎng)的MC3T3-E1細胞能夠表達更高的堿性磷酸酶活性,成骨分化效果優(yōu)于RADA16-Ⅰ 水凝膠。

通過14 d誘導培養(yǎng)后茜素紅-S染色觀察鈣結(jié)節(jié)的生成情況結(jié)果如圖 6所示,空白組細胞密度較小,僅有少量鈣結(jié)節(jié)形成;RADA16-Ⅰ組細胞密度較大,可見數(shù)個鈣結(jié)節(jié)形成;TRSAWmx組可見大量橘紅色鈣結(jié)節(jié)著色。

2.5 自組裝水凝膠對MC3T3-E1細胞OCN、ALP和VEGF基因表達的影響
根據(jù)Real-time PCR檢測結(jié)果,將空白組表達量定義為1,每組的相對表達量如圖 7所示。TRSAWmx組培養(yǎng)細胞的ALP、OCN和VEGF基因表達明顯高于空白組和RADA16-Ⅰ組(P<0.05)。

3 討論


自組裝納米多肽水凝膠RADA16-Ⅰ能夠在水相離子或生理鹽溶液觸發(fā)下,形成含水量可超過99%的納米纖維立體網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)。研究證明,這種含水量高的空間網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)能夠模擬天然細胞外基質(zhì)及微環(huán)境[12],為細胞提供三維的培養(yǎng)系統(tǒng),對細胞的粘附、增殖、分化和相關生長因子的分泌有良好的促進作用[13, 14, 15, 16]。同時,其納米級的直徑10~20 nm及形成的微小孔徑 5~200 nm[2, 3, 4]可用于骨髓中干細胞的富集,以提高成骨活性[5]。


目前,大量研究表明,通過向RADA16-Ⅰ 肽的C末端連接功能短肽片段,能夠提高肽支架的相關生物組織特異性功能[3, 17, 18]。運用此種方法得到的新 型肽水凝膠能夠在形成納米纖維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)的同時,功能基團并未參與納米絲纖維的β折疊形成,而是作為側(cè)鏈突出于β折 疊之外,以此種方式發(fā)揮作用[14, 17, 18]。Pan等[19] 證明將BMP-2相關蛋白(P24) 修飾RADA16-Ⅰ 后能增強材料促BMSCs增殖、黏附和異位成骨的能力。Tao等[20]采用BMP-7相關功能序列SNV和KPS改裝RADA16-Ⅰ所合成的水凝膠材料是一種較好的髓核組織工程材料。在課題組前期研究中,我們已經(jīng)將在細胞粘附過程中起重要作用的DGEA序列同RADA16-Ⅰ多肽C末端相接,成功地構(gòu)建了自組裝多肽納米水凝膠支架材料DGEAmx[21],提高了細胞的粘附性。在成骨修復過程中,研究者更關注如何誘導細胞成骨分化。


PTHrP基因編碼翻譯后加工主要產(chǎn)生3個具有很高活性的氨基酸末端PTHrP(1~36)PTHrP(38~94)以及PTHrP(107~139)[22],能通過調(diào)節(jié)成骨細胞作用,在新骨形成和骨塑形過程中起到重要調(diào)節(jié)作用[23]。Osteostatin是PTHrP C末端結(jié)構(gòu)域PTHrP(107~111)五肽片段,能夠介導PTH/PTHrP受體非相關性受體,在體外促進成骨細胞生長和分化[24]。


本研究中,我們通過肽固相合成法在RADA16-Ⅰ的C端與PTHrP(107~111)五肽連接得到RADA16-TRSAW,并將其與RADA16-Ⅰ等體積混合得到TRSAWmx混合液,創(chuàng)新設計并構(gòu)建出兼顧粘附和促成骨相關性能的自組裝多肽納米水凝膠TRSAWmx。TRSAWmx水凝膠纖維直徑大于RADA16-Ⅰ水凝膠纖維(P<0.05),但其仍具有納米級的直徑,能自組裝成長的納米纖維。TRSAWmx的細胞粘附能力較RADA16-Ⅰ無明顯差異,說明功能片段的加入不影響細胞在水凝膠上的粘附。細胞在TRSAWmx水凝膠上培養(yǎng)有著更佳的生長活力和骨誘導分化性能。以上實驗結(jié)果表明,自組裝水凝膠TRSAWmx促進MC3T3-E1細胞粘附、增殖和分化效果優(yōu)于單純的自組裝水凝膠RADA16-Ⅰ。


本研究初步證明,通過將RADA16-Ⅰ的C末端與PTHrP(107~111)氨基酸活性末端相接,構(gòu)建的新型自組裝納米水凝膠TRSAWmx在體外能夠兼顧細胞粘附和促成骨相關性能。這為后期可與脫鈣骨基質(zhì)、羥基磷灰石等相復合,進一步研究復合后材料的體內(nèi)相關生物學性,以及進一步運用于臨床個體化治療[24]奠定了良好理論基礎。


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