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納米金顆粒負(fù)載的免疫原性多肽體外T細(xì)胞篩選
瀏覽量:487 | 2024/5/17 12:04:07


摘要 備受關(guān)注的腫瘤免疫治療其核心在于能夠激發(fā)免疫應(yīng)答的抗原表位。該文以納米金顆粒作為篩選載體, 偶聯(lián)腫瘤抗原, 體外與人外周血單個核細(xì)胞相互作用, 以酶聯(lián)免疫斑點(diǎn)法精確檢測免疫原性來篩選具有免疫原性的抗原多肽。光譜分析證明了納米金顆粒與合成多肽的偶聯(lián),熒光顯微鏡和電子顯微鏡直接證明細(xì)胞攝取偶聯(lián)復(fù)合物, 通過檢測T細(xì)胞γ-干擾素分泌水平證實(shí)了不同多肽的免疫原性。該文優(yōu)化了實(shí)驗(yàn)參數(shù)(如pH、緩沖液體系以及孵育時間等), 顯著地減少了從多肽合成到免疫原性分析的實(shí)驗(yàn)過程所需的時間, 同時, 實(shí)驗(yàn)規(guī)模也成功地縮小到了96孔板, 達(dá)到簡單快速篩選免疫原性多肽的最終目的。


腫瘤的免疫療法利用T細(xì)胞對腫瘤特異性抗原的應(yīng)答反應(yīng)誘導(dǎo)免疫系統(tǒng)對腫瘤造成殺傷作用, 避免藥物帶來的常見不良反應(yīng), 改善患者的生活品質(zhì)[1], 給腫瘤治療帶來了希望, 成為腫瘤治療研究的熱點(diǎn)。免疫治療藥物, 尤其是免疫檢查點(diǎn)抑制抗體[如細(xì)胞毒T淋巴細(xì)胞相關(guān)抗原-4(cytotoxic Tlymphocyte-associated antigen-4, CTLA-4)和 程 序 性死亡受體-1[2](programmed death receptor-1, PD-1)已在某些腫瘤中具有顯著療效。由于其高度特異性、顯著的有效性以及相對可控的副作用[3], 腫瘤免疫治療已成為越來越多腫瘤的標(biāo)準(zhǔn)治療方式[4], 對延長存活率有很大的幫助[5]。腫瘤的免疫治療包括多細(xì)胞免疫療法[6]和特異性抗腫瘤療法[7]。殺傷性T淋巴細(xì)胞(cytotoxic T lymphocyte, CTL), 是T細(xì)胞的其中一小類, 在腫瘤細(xì)胞識別和殺傷過程中起重要作用[8]?傮w而言, 特異性免疫治療的基礎(chǔ)在于腫瘤特異性抗原的識別與處理[9], 無論采用腫瘤抗原疫苗和嵌合抗原受體(chimeric antigen receptor, CAR)方法,其核心都是要支持免疫系統(tǒng)正確識別腫瘤細(xì)胞[10]。然而, 很多情況下, 能引起免疫的抗原性質(zhì)是不明確的[11]?乖禺愋訲細(xì)胞群在體外培養(yǎng)后也可能發(fā)生顯著改變, 比如刺激后體外優(yōu)勢克隆型及次優(yōu)勢克隆型的減少[12]。因此, 確立一定數(shù)量的抗原表位(epitope)不僅是免疫治療的基礎(chǔ), 也是持續(xù)療效的保障。


雖然T細(xì)胞抗原在臨床藥物應(yīng)用和研究中非常有應(yīng)用前景, 但是一方面由于效應(yīng)T細(xì)胞和抗原遞呈細(xì)胞之間相互作用的復(fù)雜性, 另一方面是由于龐大的T細(xì)胞群和大量潛在T細(xì)胞表位的存在[13], 使得其發(fā)現(xiàn)和鑒定速度過慢, 導(dǎo)致無法滿足高效篩選的要求。在免疫干預(yù)實(shí)驗(yàn)中, 免疫原性的綜合研究或者T細(xì)胞表位的整體性研究非常困難, 因此通常利用混合多肽來監(jiān)測T細(xì)胞的應(yīng)答[14]。相比過程復(fù)雜的表達(dá)克隆[14-18]和高度儀器依賴的肽洗脫[19-22]方法,肽疫苗(peptide vaccine)能更大程度地縮短篩選潛在表位所需要的時間[23]及對大型儀器的依賴性, 提高效率及拓寬應(yīng)用廣度。此外, 新興的基于分子模型計算的T細(xì)胞表位預(yù)測已取得部分成果但仍需改進(jìn)[24]。多肽結(jié)合主要組織相容性復(fù)合體分子(majorhistocompatibility complex, MHC)的計算機(jī)預(yù)測在基于表位的疫苗發(fā)展中具有重要的實(shí)際意義, 然而該預(yù)測方法基于具免疫原性的多肽, 現(xiàn)有的大部分MHC等位基因?qū)?yīng)的抗原表位之間存在明顯的差異[25]。因此, 可能需要較長時期的算法改進(jìn)和實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)支持。


在發(fā)現(xiàn)抗原表位的實(shí)驗(yàn)方法中, 除了前述較為直接的肽洗脫法, 其他方法均采用間接的T細(xì)胞應(yīng)答觀察, 如熒光信號[26]、四聚體流式檢測[27]及細(xì)胞因子分泌檢測[28]等, 抗原信息導(dǎo)入也同樣有著各類方法[13]。納米金顆粒(gold nanoparticle, AuNP)能有效傳遞免疫原性物質(zhì)并且具有低生物毒性[29-30], 是一種潛在的腫瘤免疫治療的優(yōu)良載體。目前, TNF-α(tumor necrosis factor-α)偶聯(lián)的納米金顆粒(CYT-6091)在I期臨床實(shí)驗(yàn)階段中發(fā)現(xiàn), 其可以通過肝臟緩慢清除[31]。納米金顆粒被細(xì)胞攝取與清除的機(jī)制取決于尺寸,形狀和表面修飾特性。納米金顆粒大小在13 nm到100 nm之間, 能被淋巴引流及細(xì)胞攝取, 其中, 直徑在50 nm左右的顆粒顯示了最高的細(xì)胞攝取率, 小于15 nm的顆粒能通過核孔[32-34]。通過核定位信號肽(nuclear localization signal peptides, NLSs)、 細(xì) 胞 穿膜肽(cell penetrating peptides, CPPs)或者受體靶向型多肽的作用, 納米金顆?梢赃M(jìn)入細(xì)胞或細(xì)胞核。在實(shí)際應(yīng)用中還發(fā)現(xiàn), 經(jīng)過紫杉醇修飾的納米金顆粒在腫瘤治療中顯示對正常細(xì)胞無細(xì)胞毒性[35]。這種穩(wěn)定安全的特性也使納米金顆粒能夠成為表位篩選的理想載體。以納米金顆粒為載體的轉(zhuǎn)導(dǎo)方法與傳統(tǒng)的電穿孔法、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法[36-37]、腺病毒轉(zhuǎn)染法等相比, 在安全和穩(wěn)定方面均擁有更大的優(yōu)勢。


本研究通過在納米金顆粒表面與含巰基氨基酸之間形成金硫鍵實(shí)現(xiàn)納米金顆粒和多肽的共價結(jié)合,利用光譜分析證實(shí)納米金顆粒與合成多肽形成偶聯(lián),熒光及電鏡觀察記錄納米金顆粒進(jìn)入細(xì)胞, 通過T細(xì)胞是否分泌γ-干擾素(interferon-gamma, IFN-γ)的鑒定實(shí)驗(yàn), 驗(yàn)證不同多肽的免疫原性。此外, 本研究進(jìn)一步優(yōu)化了多個實(shí)驗(yàn)參數(shù)如pH、緩沖液、培養(yǎng)時間等,從而顯著地縮短了從合成多肽的篩選直至免疫原性分析的時間, 并且成功將篩選過程縮小至96孔板體系, 實(shí)現(xiàn)高效篩選的最終目的。本研究涉及的抗原表位高效篩選技術(shù)可為計算機(jī)模擬預(yù)測提供大量數(shù)據(jù)支持, 共同推動腫瘤精準(zhǔn)免疫治療的發(fā)展與應(yīng)用。

1 材料與方法


1.1 免疫原性多肽的合成
納米金顆粒(15 nm)可以與腫瘤相關(guān)抗原成功偶聯(lián)[32-34], 并且經(jīng)過檢測證明其免疫原性。實(shí)驗(yàn)選用多肽編號, 名稱及序列等相關(guān)信息詳見表1。其中, 編號1~7號多肽為HLA-A*0201型(MHC-I類)匹配的抗原, 顯示在I/II期臨床試驗(yàn)中均有不同程度的免疫反應(yīng)[38-39]。8號多肽同為HLA-A*0201, 由于其低免疫原性在實(shí)驗(yàn)中設(shè)置為陰性對照組[40]。9號多肽為anti-rat OVA257-264, 應(yīng)用在細(xì)胞攝取實(shí)驗(yàn)中[41]。10號多肽含RGD序列。部分多肽經(jīng)過熒光素異硫氰酸酯(fluorescein isothiocyanate, FITC)修飾。細(xì)胞攝取多肽通過熒光顯微鏡檢測。納米金顆粒與多肽的偶聯(lián)及細(xì)胞攝取等總體實(shí)驗(yàn)過程詳見下圖1。

1.2 納米金顆粒與多肽偶聯(lián)

室溫下, 硫醇可以與納米金顆粒在溶液環(huán)境中形成共價鍵[27]。首先, 將20 μmol/L的PEG(methoxy PEGThiol, 5 kDa)和20 μmol/L的多肽在離心管中等體積混合, 形成多肽與含巰基聚乙二醇(PEG)摩爾比為1׃1。然后, 將混合物加入到15 nm檸檬酸鹽包被的納米金(1.16 nmol/L)膠體中, 形成巰基與納米金顆粒的摩爾比(以下簡稱為硫金摩爾比)為2 500׃1。室溫攪拌金/PEG/多肽混合物1 h, 使硫醇與檸檬酸在納米金顆粒中完全置換。然后, 12 000 r/min離心30 min富集偶聯(lián)復(fù)合物。棄上清, 并用合適體積的緩沖液重懸偶聯(lián)復(fù)合物。為了提高偶聯(lián)效率, 需調(diào)整實(shí)驗(yàn)過程中的pH及緩沖液, 偶聯(lián)結(jié)果通過納米金顆粒與偶聯(lián)復(fù)合物在380~610 nm波長之間吸收峰檢測得到。


1.3 樹突狀細(xì)胞的制備

用血細(xì)胞分離機(jī) (Fresenius Kabi公司 )分離收集病人外周血單個核細(xì)胞(pe riphe r a l bloodmononuclear cell, PBMC)。每個病人收集約2×109個PBMC, 用AIM-V培養(yǎng)基(Gibco公司)洗2遍后, 稀釋至4×106/mL。然后, 將PBMC按每孔約1×106/mL接種到96孔板中培養(yǎng)2 h。貼壁細(xì)胞加入樹突狀細(xì)胞(dendritic cell, DC)培 養(yǎng) 基(含100 ng/mL GM-CSF、1 000 U/mL IL-4和50 ng/mL FLT3-L)誘導(dǎo)培養(yǎng)未成熟DC細(xì)胞。所有細(xì)胞因子均購買自Novoprotein公司。


1.4 293A細(xì)胞和巨噬細(xì)胞的制備

除DC細(xì)胞外, 本研究中還應(yīng)用到了293A細(xì)胞和巨噬細(xì)胞。用DMEM培養(yǎng)基(Dulbecco’s ModifiedEagle Medium)培養(yǎng)293A細(xì)胞, 1.0 mmol/L丙酮酸鈉,100 U/mL青霉素和100 μg/mL鏈霉素, 加10%胎牛血清(fetal bovine serum, FBS), 在37 °C、5% CO2及飽和濕度條件下培養(yǎng), 每3 d傳代, 取對數(shù)生長期細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。小鼠腹腔注射500 μL液體石蠟, 饑餓處理72 h刺激巨噬細(xì)胞生成, 收集腹腔液, 于1 000 r/min離心3 min, PBS洗3次, 加RPMI 1640, 在37 °C、5%CO2及飽和濕度培養(yǎng), 每3d更換培養(yǎng)基。


1.5 細(xì)胞攝取納米金顆粒–多肽偶聯(lián)復(fù)合物

如前所述, 通過熒光顯微鏡檢測DC細(xì)胞攝取FITC標(biāo)記的納米金顆粒–多肽復(fù)合物情況。簡單地說, 將50 μL(多肽含量為60 nmol)按上述方法配制的納米金顆粒–多肽復(fù)合物加入到150 μL含有5×105個未成熟DC細(xì)胞的培養(yǎng)體系中, 培養(yǎng)2 h(37 °C、5%CO2及飽和濕度)。處理后細(xì)胞用生理鹽水洗2次, 保存在生理鹽水溶液中用于熒光顯微鏡檢測。用透射電子顯微鏡(transmission electron microscopy, TEM)直接觀察細(xì)胞攝取納米金顆粒能力時, 由于DC細(xì)胞樣本量的限制, 無法滿足切片要求以完成TEM觀察,因此改用293A細(xì)胞檢測細(xì)胞攝取納米金顆粒的情況。方法如下, 培養(yǎng)約1×108個293A細(xì)胞, 用15 mL納米金顆粒處理。處理后細(xì)胞收集并用多聚甲醛固定。使用HITACHI H-7650透射電子顯微鏡完成電鏡實(shí)驗(yàn)。


1.6 酶聯(lián)免疫斑點(diǎn)試驗(yàn)

抗原特異性T細(xì)胞應(yīng)答反應(yīng)是通過酶聯(lián)免疫斑點(diǎn) 試 驗(yàn)(enzyme-linked immunospot, ELISPOT)檢 測IFN-γ的釋放水平來實(shí)現(xiàn)的, 實(shí)驗(yàn)設(shè)置3個對照組(分別為空白對照組、陰性對照組和陽性對照組)及不同濃度的實(shí)驗(yàn)組, 使用人IFN-γ預(yù)包被ELISPOT試劑盒(達(dá)科為生物技術(shù)股份有限公司)進(jìn)行檢測。首先用200 μL培養(yǎng)基預(yù)包被每孔, 然后將100 μL含1×105個細(xì)胞的液體加入到除空白對照組外的各實(shí)驗(yàn)孔,空白對照組加對應(yīng)體積培養(yǎng)基。實(shí)驗(yàn)所用細(xì)胞為PBMC, 在陽性對照組孔加入陽性刺激劑10 μL/孔,等體積培養(yǎng)基加入到陰性對照組孔, 濃度梯度的納米金顆粒–多肽復(fù)合物加入到各實(shí)驗(yàn)孔。37 °C、5%CO2孵育20 h后, 在4 °C用去離子水裂解10 min。用試劑盒提供的洗液洗5遍后, 每孔加100 μL生物素偶聯(lián)的IFN-γ單抗孵育1 h。重復(fù)上述清洗步驟后, 每孔加100 μL的鏈霉親和素-HRP后孵育1 h。再重復(fù)清洗步驟后, 每孔加100 μL新鮮配置AEC顯色液, 并將實(shí)驗(yàn)板避光20 min顯色。顯色完成后棄溶液, 用去離子水洗若干遍后, 自然晾干實(shí)驗(yàn)板, 用Bioreader4000-PRO-X(Bio-Sys, Germany)讀板儀進(jìn)行斑點(diǎn)讀取, 單次實(shí)驗(yàn)設(shè)置3個復(fù)孔進(jìn)行均值統(tǒng)計, 3次獨(dú)立重復(fù)實(shí)驗(yàn)后, 采用Origin 8.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析。


2 結(jié)果


2.1 納米金顆粒和免疫原性多肽的偶聯(lián)
各參數(shù)最優(yōu)的情況下, 實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示, 納米金顆粒與免疫原性多肽的偶聯(lián)僅可在等電點(diǎn)附近或微酸性條件下獲得成功。圖2顯示, 10號多肽[CK(FITC)KKKKKGGGRGDMFG]與納米金顆粒在最佳pH7.5的條件下成功偶聯(lián)。如果pH不適宜, 納米金顆粒偶聯(lián)效率極低, 甚至?xí)霈F(xiàn)沉降現(xiàn)象, 導(dǎo)致偶聯(lián)失敗。此外, 偶聯(lián)過程中, 不同pH條件下, 多肽-PEG中間體加入到納米金顆粒中后, 溶液顏色將發(fā)生從酒紅到淡紫不同程度的改變。
實(shí)驗(yàn)選取9號多肽[SIINFEK(FITC)L, H-2 KBrestricted]研究不同緩沖液對偶聯(lián)結(jié)果的影響。在pH5.8的條件下成功偶聯(lián)后, 分別用去離子水和生理鹽水稀釋偶聯(lián)復(fù)合物。結(jié)果顯示, 當(dāng)實(shí)驗(yàn)過程中所用PEG用生理鹽水稀釋或者偶聯(lián)復(fù)合物用生理鹽水重懸時, 納米金顆粒將出現(xiàn)沉降導(dǎo)致偶聯(lián)失敗。可能的原因是, 生理鹽水中鈉離子影響了溶液的穩(wěn)定性。當(dāng)PEG用去離子水稀釋并且偶聯(lián)復(fù)合物也用去離子水重懸時, 偶聯(lián)成功但會有少量偶聯(lián)復(fù)合物將在離心管內(nèi)壁上殘留引起損耗。當(dāng)使用含0.2%Tween 20的乙醇溶液重懸偶聯(lián)復(fù)合物時, 離心管內(nèi)壁殘留引起的損耗將顯著減少。圖3顯示了9號多肽[SIINFEK(FITC)L, H-2 KB restricted]在最佳pH5.8成功偶聯(lián)并用含0.2% Tween 20的乙醇溶液重懸。

硫金摩爾比會隨著多肽序列大小及多肽體積的改變而改變。偶聯(lián)成功的關(guān)鍵在于形成金硫鍵。因此硫金摩爾比的改變, 將會直接影響免疫原性多肽半胱氨酸上巰基與金顆粒表面形成金硫鍵。結(jié)果顯示, 當(dāng)硫金摩爾比為2 500׃1時, 納米金顆粒與多肽成功偶聯(lián)的效率最高。圖4顯示了2種不同免疫原性多肽, 9號多肽[SIINFEK(FITC)L, H-2 KB restricted]和10號多肽[CK(FITC)KKKKKGGGRGDMFG]成功與納米金顆粒偶聯(lián)。吸收值的不同顯示了2種不同硫金摩爾比下不同的偶聯(lián)效率。

2.2 縮小體系規(guī)模實(shí)現(xiàn)高效篩選

為 了 減 小 偶 聯(lián) 體 系 的 規(guī) 模, 使 用9號 多 肽[SIINFEK(FITC)L, H-2 KB restricted]在最佳pH5.8時, 與納米金顆粒偶聯(lián)。在同一離心管中, 混合20 μmol/L等體積7.2 μL多肽和PEG, 形成摩爾比為1׃1。將混合物加到粒徑為15 nm的檸檬酸鹽包被的100 μL納米金顆粒中, 室溫攪拌金/PEG/多肽混合物1 h, 使硫醇和檸檬酸在納米金顆粒表面完全交換。混合完全后, 將偶聯(lián)復(fù)合物轉(zhuǎn)移到1.5 mL離心管中, 12 000 r/min離心30 min純化偶聯(lián)復(fù)合物并去除上清。用100 μL含0.2% Tween 20的乙醇溶液重懸偶聯(lián)復(fù)合物。圖5顯示了380~610 nm的光譜吸收以證實(shí)偶聯(lián)成功。


2.3 偶聯(lián)復(fù)合物細(xì)胞實(shí)驗(yàn)及電鏡評估
納米金顆粒與多肽[CSIINFEK(FITC)L, H-2 KBrestricted]偶聯(lián)復(fù)合物用上述方法在最佳條件下合成。將偶聯(lián)復(fù)合物加入到DC細(xì)胞后, 分別孵育2、4、6、16 h, 孵育處理后, 細(xì)胞進(jìn)行熒光顯微鏡檢測。圖6顯示了細(xì)胞不同時間攝取納米金顆粒–多肽復(fù)合物的情況, 說明使用納米金顆粒來篩選免疫原性多肽的方法是可行的, 且孵育時間可縮短至2 h, 即有一定數(shù)量納米金顆粒攜帶抗原多肽進(jìn)入細(xì)胞。

此外, 偶聯(lián)復(fù)合物也分別被加入到DC細(xì)胞, 巨噬細(xì)胞和293A細(xì)胞中, 以檢測不同細(xì)胞攝取納米金顆粒–多肽復(fù)合物的情況。圖7顯示了3種細(xì)胞均可以攝取納米金顆粒–抗原多肽偶聯(lián)復(fù)合物。

由于DC細(xì)胞來源限制, 且上述實(shí)驗(yàn)已證明,293A細(xì)胞同樣能有效吞噬納米金顆粒, 為滿足電鏡實(shí)驗(yàn)中所需的大量細(xì)胞數(shù), 本研究采用293A細(xì)胞進(jìn)行電鏡實(shí)驗(yàn)觀察細(xì)胞對納米金顆粒–抗原多肽復(fù)合物攝取情況。結(jié)果如圖8所示, 可見納米金顆粒能進(jìn)入細(xì)胞, 但是仍有部分聚團(tuán)現(xiàn)象, 部分實(shí)驗(yàn)條件可能需要進(jìn)一步優(yōu)化。

2.4 不同多肽進(jìn)入細(xì)胞后的免疫原性
實(shí)驗(yàn)使用PBMC進(jìn)行ELISPOT檢測, 以評價不同多肽進(jìn)入細(xì)胞后的免疫原性, 根據(jù)刺激T細(xì)胞分泌IFN-γ水平的不同證明該篩選方法的可行性。圖9的結(jié)果顯示, 在空白對照中無IFN-γ斑點(diǎn)形成, 而陽性對照中有大量斑點(diǎn)形成, 陰性對照組中有極少量斑點(diǎn)形成。在實(shí)驗(yàn)組中, 形成斑點(diǎn)量的不同取決于不同抗原種類及抗原數(shù)量。通過ELISPOT讀板儀讀取實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)后, 結(jié)果如圖10所示。數(shù)據(jù)顯示, 抗原刺激PBMC形成的斑點(diǎn)量與所加的量并不成比例。這可能是由于PBMC細(xì)胞者所患疾病種類或惡性程度不同所致。所加偶聯(lián)復(fù)合物為10 μL實(shí)驗(yàn)組比其他兩組形成明顯多的斑點(diǎn), 可能的原因是, 納米金顆;驓埩舻南♂寗┤鐧幟仕釋(xì)胞有一定的毒性。

3 討論


隨著基因測序的應(yīng)用推廣, 針對腫瘤的治療勢必將趨于精準(zhǔn)化和個性化, 其應(yīng)用主要包括兩個方面, 即精準(zhǔn)診斷和精準(zhǔn)治療。其中, 精準(zhǔn)診斷深入基因水平對腫瘤發(fā)生原因進(jìn)行定位; 治療上的精準(zhǔn)化則指的是針對病因的靶向用藥。精準(zhǔn)醫(yī)療作為一種新型的醫(yī)學(xué)概念及醫(yī)療模式, 目前正受到國家的大力支持, 基因測序政策的放開也打開了精準(zhǔn)醫(yī)療產(chǎn)業(yè)化的大門。免疫治療作為繼手術(shù)、放療和化療之后的第四大腫瘤治療技術(shù), 其核心要素抗原表位的篩選必將成為腫瘤免疫療法中的重要一環(huán)和常規(guī)技術(shù)。腫瘤相關(guān)免疫原性多肽來源于腫瘤, 作為識別腫瘤抗擊腫瘤最直接的武器, 其免疫原性強(qiáng)弱直接關(guān)系到腫瘤治療的效果。


本研究從納米金顆粒良好的理化性質(zhì)及廣泛的生物學(xué)應(yīng)用入手, 將其與抗原多肽進(jìn)行偶聯(lián)實(shí)現(xiàn)快速且簡便的篩選。在實(shí)驗(yàn)過程中, 不斷優(yōu)化各種參數(shù), 如納米金顆粒與多肽偶聯(lián)時的pH、緩沖液體系、稀釋劑成分、硫金摩爾比、細(xì)胞攝取偶聯(lián)復(fù)合物的時間等參數(shù), 實(shí)現(xiàn)最優(yōu)的偶聯(lián)條件、最少的偶聯(lián)損耗以及最短的實(shí)驗(yàn)時間。在多肽免疫原性實(shí)驗(yàn)中成功驗(yàn)證不同多肽的免疫原性。此外, 研究還成功實(shí)現(xiàn)了反應(yīng)體系的縮小, 以適應(yīng)高通量篩選的需求,F(xiàn)今, 納米科技在生物學(xué)、醫(yī)學(xué)等領(lǐng)域發(fā)揮著越來越重要的作用, 納米材料的優(yōu)良特性使其擁有廣泛的應(yīng)用前景。生化藥品的研發(fā)如抗癌藥、抗心血管病藥、抗艾滋病和糖尿病藥, 特別是DNA藥物都可引入納米材料。因此, 本研究所涉及的實(shí)驗(yàn)成果在抗病毒感染、腫瘤治療、疫苗開發(fā)等方面都具有重要的理論和實(shí)際意義。已有研究表明, 粒徑小于50 nm的微粒, 能穿過肝臟內(nèi)皮或通過淋巴傳遞到達(dá)脾和骨髓, 或者攜帶小分子多肽或藥物跨越血–腦屏障。因此, 針對納米金顆粒的研究必將極大地推動腫瘤的免疫治療。此外, 本研究后期可致力于尋找和設(shè)計DC細(xì)胞靶向型多肽, 可以直接利用人外周血單核細(xì)胞, 無需分離DC及T細(xì)胞, 減少細(xì)胞分離與共培養(yǎng)步驟。


抗原表位篩選結(jié)果最終可通過合適的方式, 轉(zhuǎn)換為醫(yī)療數(shù)據(jù)呈現(xiàn)給研究人員、醫(yī)務(wù)工作者及患者。隨著數(shù)據(jù)量的逐漸豐富, 腫瘤的新的基因標(biāo)志或特異/共有的分子特征可能被發(fā)現(xiàn), 其治療方法也將隨著現(xiàn)有經(jīng)驗(yàn)的積累而得到簡化與快速采用。本研究所涉及的實(shí)驗(yàn)方法可與計算機(jī)模擬及預(yù)測相結(jié)合,利用現(xiàn)有的MHC分子三維結(jié)構(gòu)與實(shí)驗(yàn)篩選出的免疫原性差異明顯的幾種多肽進(jìn)行演算, 從抗原親和力微觀角度解釋其免疫原性的區(qū)別。隨著MHC分子的空間結(jié)構(gòu)越來越清晰化和準(zhǔn)確化, 多種MHC分子–抗原復(fù)合物的數(shù)學(xué)模型已被建立, 通過計算機(jī)模擬運(yùn)算能預(yù)估出每種抗原與MHC分子的親和力數(shù)值。但鑒于MHC分子亞型的多樣性, 新抗原前后氨基酸序列以不同組合、不同長度形成表位的多樣性,數(shù)據(jù)龐大。目前, 該預(yù)測方法仍不夠成熟, 假陽性或假陰性仍普遍存在, 需要后續(xù)耗時耗力的驗(yàn)證工作。因而, MHC分子與抗原的親和力的準(zhǔn)確預(yù)估, 仍有待于通過數(shù)據(jù)的不斷積累、預(yù)測模型的不斷優(yōu)化來完成。此外, 研究也可覆蓋MHC-I類分子及MHC-II類分子對抗原多肽的遞呈能力, 這兩類分子均可在免疫應(yīng)答過程中受細(xì)胞因子的誘導(dǎo)而表達(dá), 在腫瘤治療中可通過提高抗原遞呈細(xì)胞表面表達(dá)量達(dá)到更好的治療效果。當(dāng)多肽能穩(wěn)定均勻的分散在納米金顆粒上的時候, 進(jìn)行多肽與MHC-I類及II類分子的親和力模擬及預(yù)測, 通過計算機(jī)模擬找到這兩類分子中起結(jié)合作用的關(guān)鍵氨基酸, 可為預(yù)測抗原遞呈能力提供理論基礎(chǔ)。


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