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肽類樹枝狀大分子: 自組裝膠束及藥物釋放研究
瀏覽量:894 | 2024/5/13 13:54:26


摘要 本文以三代聚谷氨酸肽類樹枝狀分子(G3-Glu)為大分子引發(fā)劑, 引發(fā) N-羧基-L-苯丙氨酸-環(huán)內(nèi)酸酐(NCA-Phe)的開環(huán)聚合反應, 制備聚谷氨酸樹枝狀大分子-聚苯丙氨酸嵌段共聚物. 嵌段共聚物通過自組裝形成以聚苯丙氨酸鏈段為核, 聚谷氨酸樹枝狀大分子為殼的膠束. 將抗腫瘤藥物阿霉素負載到高分子膠束中, 研究其藥物釋放性能及體外抗腫瘤效果. 結(jié)果表明, 共聚物膠束具有良好的生物相容性. 載藥膠束具有藥物緩釋效果, 藥物持續(xù)釋放時間可達 60 h. 載藥膠束的體外抗腫瘤實驗表明其對肝癌細胞 HepG2 具有很好的殺滅效果, 共培養(yǎng) 48 h 后對癌細胞的殺死率可高達 75%.

自組裝在新型功能材料的構(gòu)筑中已顯示出巨大的潛力[1, 2]. 合成多肽分子通過自組裝形成的材料在其結(jié)構(gòu)、形貌和性能上具有無可比擬的優(yōu)勢[3]. 合成多肽自組裝材料不僅可以形成球形、棒狀、線性及囊泡等不同的結(jié)構(gòu)和形態(tài)[4~7], 并且還具有各種特異性的物理、化學或生物學功能[4, 8, 9]. 以天然氨基酸為原料的合成多肽, 由于其良好的生物相容性和生物降解性, 已成為一類重要的生物醫(yī)用材料, 在疾病診治和組織修復等生物醫(yī)學領域發(fā)揮著重要的作用. 利用肽類大分子自組裝構(gòu)建的藥物/基因傳輸載體材料可被賦予優(yōu)越的智能環(huán)境響應和靶向功能性[10~12]; 多肽自組裝水凝膠在組織修復中顯示出很好的組織再生誘導效果[13~15].


肽類樹枝狀大分子除了具有普通樹枝狀大分子特征如規(guī)整性、高度支化、表面高密度官能團、納米尺度、分子量單一等外, 還具有類似蛋白的結(jié)構(gòu), 以及大量外圍官能團賦予的良好水溶性[16]. 基于肽類樹枝狀大分子雙親性嵌段共聚物自組裝構(gòu)建的膠束與傳統(tǒng)的線形雙親性嵌段共聚物自組裝形成的高分子膠束相比, 不僅具有更高的穩(wěn)定性, 其外圍具有更多可供修飾的官能團, 有利于進一步進行智能、靶向等功能的修飾. 例如, 樹枝狀大分子嵌段聚合物在相行為上與線形嵌段聚合物就存在明顯差異[17]; 通過外圍的樹枝狀分子以改善自組裝體的溶解性能, 從而改變了自組裝體的物理、化學特性[18]; 利 用 dendron-like/linear/dendron-like 嵌段聚合可 構(gòu)筑形態(tài)均一的自組裝載體, 并用作藥物緩釋的載體[19].


本文通過發(fā)散-收斂相結(jié)合的方法合成三代聚谷氨酸樹枝狀大分子(G3-Glu)[20], 以樹枝狀大分子核中的氨基引發(fā) N- 羧 基 -L- 苯丙氨酸 - 環(huán)內(nèi)酸酐(NCA-Phe)的開環(huán)聚合[21]合成聚谷氨酸樹枝狀大分子-聚苯丙氨酸雙親性嵌段共聚物, 通過自組裝形成膠束. 以掃描電子顯微鏡(SEM)、透射電子顯微鏡(TEM)表征了共聚物膠束的結(jié)構(gòu)形貌. 將疏水性抗腫瘤藥物阿霉素負載到自組裝膠束中, 研究了載藥膠束的藥物釋放行為, 體外細胞攝取以及對肝癌細胞 HepG2 的殺滅效果.


2 實驗部分


2.1 實驗試劑

叔丁氧羰基-谷氨酸(Boc-Glu-COOH), 谷氨酸雙芐酯(H-Glu(OBzl)-OBzl), 1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳二亞胺(EDC), 1-羥基苯并三唑(HOBT), N,N-二異丙基乙胺(DIEA), 三氟乙酸(TFA), 芐氧羰基-苯丙氨酸(N-Cbz-Phe), 四氫呋喃, 二氯甲烷, 正己烷, 乙酸乙酯, 乙醇, NaHCO3, NaHSO4, NaCl, 無水 MgSO4, DMEM(高糖)細胞培養(yǎng)基等.


2.2 儀器

核磁共振波譜儀(NMR, Bruker AV-400); 傅立葉紅外光譜儀(FTIR, Necolet PE Spectrometer); 時間飛行質(zhì)譜(TOF, Bruker Autoflex III); 超聲波清洗器(KQ-300DE); 掃描電子顯微鏡(SEM, JSM-5900LV); 透射電子顯微鏡(TEM, JEM-100CX); 動態(tài)光散射儀(DLS, Malvern Zetasizer Nano ZS); 激光共聚焦掃描顯微鏡(CLSM, Leica TCP SP5).


2.3 聚谷氨酸三代樹枝狀大分子(G3-Glu)的合成
2.3.1 谷氨酸二代(G2-Glu)的合成
Boc-Glu-COOH 和過量的 H-Glu(OBzl)-OBzl 在氮氣保護下, 通過 HOBT/EDC/DIEA 催化縮合, 在 CH2Cl2 中常溫反應 24 h. 用飽和 NaHCO3 溶液、NaHSO4 溶液、飽和 NaCl 溶液反復洗滌產(chǎn)物. 對產(chǎn)物濃縮后在 CH2Cl2/正己烷中重結(jié)晶, 過濾干燥后得到產(chǎn)物 1, 如圖 1.

2.3.2 三代聚谷氨酸樹枝狀大分子(G3-Glu)的合成

谷氨酸二代(G2-Glu)在氮氣保護下, 用 TFA 脫除 Boc 保護, 減壓除去 TFA, 得到產(chǎn)物 2. 產(chǎn)物 2 在氮氣保護下加入到 Boc-Glu-COOH 中, 通過 HOBT/ EDC/DIEA 催化縮合 , 常溫反應 24 h. 用飽和NaHCO3 溶液、NaHSO4 溶液、飽和 NaCl 溶液反復洗滌數(shù)次. 利用硅膠柱過柱分離, 得到聚谷氨酸三代樹枝狀大分子(G3-Glu)(產(chǎn)物 3, 圖 1).


2.4 共聚物的制備
2.4.1 大分子引發(fā)劑 G3-Glu-NH2 的制備

聚谷氨酸三代樹枝狀大分子(G3-Glu)在氮氣的保護下, 用 TFA 脫除 Boc 保護, 減壓除去 TFA 得到產(chǎn)物 4. 將產(chǎn)物 4 在 NaOH 醇溶液中調(diào)節(jié) pH 值, 充分攪拌, 旋干溶劑, 將固體溶于 CH2Cl2, 濾除固體, 將濾液旋干待用.


2.4.2 N-羧基-L-苯丙氨酸-環(huán)內(nèi)酸酐(NCA-Phe)的合成

稱取無水干燥的芐氧羰基-苯丙氨酸(Cbz-Phe), 在氮氣保護下溶于 20 mL 無水 THF 中, 升溫至 40 ℃; 將 SOCl2 滴入上述反應體系, 反應 4 h. 把反應液加入過量無水正己烷中, 低溫靜置 12 h. 將得到的白色沉淀用無水乙酸乙酯/無水正己烷反復重結(jié)晶 3 次, 真空干燥得到白色針狀晶體.


2.4.3 嵌段共聚物的合成

按照摩爾比 1:10 的比例, 準確稱取干燥處理后的大分子引發(fā)劑和 L-Phe-NCA 投入反應瓶中, 抽真空后通入氮氣保護. 加入 DCM/DMF 混合溶劑, 室溫反應 48 h, 得到產(chǎn)物 5. 在壓力約為 0.8 MPa 的高壓釜中, 以 Pd/C 為催化劑, 加入 H2, 室溫反應 24 h, 脫去 OBzl. 過濾分離, 減壓除去溶劑和芐醇.


2.5 臨界膠束濃度的測定

以芘為熒光探針測定自組裝膠束的臨界膠束濃度, 在固定的熒光激發(fā)波長下, 測定 I338 和 I335 處的熒光吸收值.


2.6 體外藥物釋放

將嵌段共聚物溶于甲醇中, 在超聲條件下緩慢滴加到去離子水中, 靜置, 減壓除去甲醇. 按照比例將嵌段共聚物和阿霉素配成甲醇溶液, 在超聲條件下緩慢滴加到去離子水中, 在 4 ℃下透析 24 h, 冷凍干燥后備用. 


準確稱取一定量的載藥膠束, 溶于良溶劑中, 測定該溶液在波長 485 nm 處的熒光吸收值, 依據(jù)標準吸收曲線計算載藥膠束中阿霉素的量. 


精確稱取載藥膠束溶于 PBS 緩沖溶液中(pH 7.4), 配成 1 mg/mL 溶液. 設置 3 組樣, 在截留分子量為2000 Da 的透析袋中加入 1 mL 的緩沖溶液, 置于 25 mL 37 ℃的 PBS 中. 根據(jù)不同時間, 取出 1 mL 釋放介質(zhì), 同時補充 1 mL PBS 溶液. 測定介質(zhì)在波長 485 nm 處的熒光吸收值, 繪制載阿霉素膠束的體外釋放曲線. 并測定對照組鹽酸阿霉和阿霉素的釋放曲線.


2.7 細胞毒性實驗

將 3T3 細胞接種于 3 塊 96 細胞培養(yǎng)孔板(T = 12 h, 1×104個/孔; t = 24 h, 5×103個/孔; t = 48 h, 3×103個/孔). 培養(yǎng) 24 h 后, 加入空白膠束, 濃度分別為 150, 100 和 50 µg/mL, 每個濃度設置 3 個平行樣, 并設置對照組. 3T3 細胞在培養(yǎng)基中分別培養(yǎng) 12、24 和 48 h后, 用 PBS 緩沖溶液(pH 7.4)沖洗后并更換新鮮的培養(yǎng)基, 加入 CCK-8, 繼續(xù)培養(yǎng) 2 h, 在酶標儀測定 490 nm 處的吸光值, 計算細胞存活率.


2.8 體外細胞攝取載藥膠束

取 HepG2 細胞, 加培養(yǎng)液稀釋, 按 1 × 104 個/孔的細胞密度接種于玻璃培養(yǎng)皿中, 待細胞貼壁生長后, 加入載藥膠束, 阿霉素的濃度為 10 µg/mL. 細胞培養(yǎng)2 h后, 用激光共聚焦顯微鏡(CLSM)觀察體外細胞攝取載藥膠束的情況. 激發(fā)光波長為 485 nm, 散射光波長為 595 nm.


2.9 體外抗腫瘤效果

取 HepG2 細胞, 按取點測定時間在每孔加培養(yǎng)液稀釋 t = 12 h, 1 × 104 個/孔; t = 24 h, 5 × 103 個/孔; t = 48 h, 3 × 103 個/孔. 加入載藥膠束, 控制阿霉素的終濃度分別為 15, 10 和 5 µg/mL. 分別培養(yǎng) 12、24 和48 h 后, 用 PBS 緩沖溶液清洗 3 次, 置換入新鮮的培養(yǎng)液, 加入 CCK-8 并輕微震蕩, 繼續(xù)培養(yǎng) 2 h, 在酶標儀 490 nm 測定吸光度, 計算細胞存活率.


3 結(jié)果與討論


兩親性不對稱拓撲結(jié)構(gòu)的肽類樹枝狀嵌段聚合物, 通過以三代谷氨酸扇形分子 G3(Glu)-NH2 為大分子引發(fā) NCA-Phe 的開環(huán)聚合合成, 如圖 1 所示. 利用純化過的 G3(Glu)-NH2 在嚴格無水的條件下引發(fā)NCA 的開環(huán)聚合. 利用 1H NMR 對合成過程中的重要產(chǎn)物進行結(jié)構(gòu)表征. 


圖 2(a)為單體 NCA-Phe(CDCl3 為溶劑)1H NMR 圖譜, 根據(jù)產(chǎn)物的特征峰歸屬及積分面積證明了NCA-Phe 的合成, 化學位移在 0.5 和 2.0 之間的微弱吸收峰為未除盡的四氫呋喃溶劑信號峰. 通過 FT-IR表征, NCA-Phe 在 1856 和 1776 cm−1 處出現(xiàn)了酸酐結(jié)構(gòu)的特征吸收, 進一步證明了 NCA-Phe 的合成. 如圖 2(b)所示為 G3-Glu(d6-DMSO), 在 δ 1.75~2.75 ppm之間出現(xiàn)了 G3-Glu 的骨架吸收; δ 5.1 ppm 歸屬為OBzl 保護中−CH2-O−氫的耦合裂分; δ 7.2~7.4 ppm 之間為 OBzl 保護中苯環(huán)上氫的信號; 化學位移 8 ppm出現(xiàn)了−NH−的吸收. 利用大分子引發(fā)劑的氨基引發(fā)NCA-Phe 的開環(huán)聚合, 脫去 OBzl 保護后, 在 CD3OD中的氫譜如圖 2(c)所示. 紅外光譜結(jié)果顯示, 在親水片段的扇形谷氨酸脫去芐酯保護之后, 游離態(tài)羧基中的−OH 伸縮峰 3550~3500 cm–1 的吸收明顯增強. 同時, 時間飛行質(zhì)譜結(jié)果顯示在 m/z 2409.23 處的信號最強, 這與設計合成嵌段分子量相符; 此分子量測定選用 DHB 為基質(zhì).

扇形 G3(Glu)片段外圍擁有大量的羧基, 呈現(xiàn)出較強的親水性; 而聚苯丙氨酸片段則呈現(xiàn)出疏水性能. 將兩親的聚合物溶于良溶劑, 并逐滴加入到去離子水中, 通過親疏水作用形成自組裝體, 疏水片段的聚苯丙氨酸且存在π-π堆疊的共軛作用[22], 如圖 3 所示. 疏水性的阿霉素通過親疏水作用可以載入自組裝膠束的內(nèi)核.

以芘為熒光分子探針, 研究嵌段共聚物自組裝膠束的臨界膠束濃度. 芘所處環(huán)境的極性改變時, 熒光特征發(fā)射譜的位移發(fā)生變化. 自組裝膠束中, 芘分散在核內(nèi), 環(huán)境極性發(fā)生變化時, 熒光吸收峰從 335 nm 紅移到 338 nm. 當嵌段共聚物濃度低于臨界膠束濃度時, I338/I335 值基本保持不變; 當濃度達到臨界膠束濃度時, I338/I335 值隨聚合物濃度增加而呈現(xiàn)突變的趨勢. 通過線性擬合, 計算得到的臨界膠束濃度為19.50 μg/mL(圖 4).

動態(tài)光散射分析(DLS)研究空白膠束及載藥膠束的粒徑分布. 50 μg/mL 空白膠束在水溶液中粒徑分布情況如圖 5(a)所示, 結(jié)果顯示自組裝膠束在水中具有較好的單分散性, PDI 值為 0.320. 載藥后的膠束粒徑未出現(xiàn)明顯增大(圖 5(b)), PDI 值為 0.394. 膠束載藥前后粒徑未呈現(xiàn)出大的變化原因為: 疏水的阿霉素增容于自組裝體的疏水核內(nèi)部, 但同時也使水溶液對膠束整體親疏水作用力增強, 壓縮效應增大; 同時阿霉素、聚苯丙氨酸之間存在相互作用, 有利于體積壓縮[23].

自組裝膠束的形貌利用透射電鏡和掃描電鏡觀察. 通過 TEM 觀察空白和載藥膠束, 發(fā)現(xiàn)膠束載藥前后結(jié)構(gòu)有較明顯的差異(圖 6). 空白膠束為球形(圖6(a)), 形狀規(guī)則、分散性良好; 負載阿霉素后(圖 6(b)), 膠束出現(xiàn)明顯的核-殼結(jié)構(gòu), 這可能是因為阿霉素具有很強的疏水性和共軛結(jié)構(gòu), 并且存在于膠束的疏水核中, 影響了膠束內(nèi)核的物理化學性質(zhì)及空間結(jié)構(gòu), 導致明顯的核-殼邊界[22, 23]. SEM 中(圖 6(c)), 嵌段共聚物在 100 μg/mL 的濃度下自組裝形成的空白膠束粒徑大約在 80~100 nm 之間, 分散良好.

濃度為 100 μg/mL 樹枝狀大分子嵌段共聚物膠束中疏水阿霉素的最大載藥量約為 15%. 載藥膠束的體外藥物釋放在 PBS 中進行, 以疏水性藥物阿霉素和親水性藥物鹽酸阿霉素為對照樣(圖 7). 載藥膠束在 12 h 時藥物的累積釋放量約為 30%, 當釋放時間為 60 h 時, 藥物的累積釋放量達到 80%. 與鹽酸阿霉素相比, 膠束對藥物具有明顯的緩釋作用. 自由的疏水阿霉素在透析在中有緩慢析出的現(xiàn)象, 不易溶于 PBS 緩沖溶液, 在釋放考察的時間范圍內(nèi)基本不釋放. 研究結(jié)果表明載藥膠束具有緩釋效果.

膠束細胞毒性的結(jié)果如圖 8 所示. 通過 3 個濃度梯度(50, 100 和 150 μg/mL)及 3 個時間點(12、24 和48 h)的檢測評價發(fā)現(xiàn), 小鼠 3T3 成纖維細胞的存活率均未出現(xiàn)明顯降低, 說明膠束對3T3細胞沒有明顯的細胞毒性, 具有很好的生物相容性.


阿霉素只有進入腫瘤細胞的細胞核才能發(fā)揮藥效. 為了研究載藥膠束是否具有抗腫瘤效果和細胞內(nèi)緩釋作用, 通過激光掃描共聚焦顯微鏡(CLSM)觀察了肝癌細胞 HepG2 對載藥膠束的吞噬.


激光共聚焦結(jié)果如圖 9 所示. 圖 9(a)和圖 9(b)為鹽酸阿霉素和阿霉素與細胞共培養(yǎng) 2 h, 阿霉素在細胞內(nèi)的分布結(jié)果. 圖 9(c)為載阿霉素膠束在細胞內(nèi)分布及釋放效果, 在圖 9(c2)中可以看出載有阿霉素的膠束納米顆粒聚集在細胞核周圍并向細胞核內(nèi)釋放阿霉素, 細胞核內(nèi)出現(xiàn)較強的紅色熒光. 而在圖 9(a2)中, 鹽酸阿霉素大量進入細胞核, 顯示出強的紅色熒光. 圖 9(b2)顯示, 阿霉素由于其水溶性差, 不容易進入細胞, 所以 2 h 后細胞內(nèi)部基本沒有阿霉素. 載有阿霉素的膠束通過細胞內(nèi)吞的形式進入到細胞釋放出負載的藥物, 不僅起到了對阿霉素的增容作用, 同時具有緩釋效果.

在不同 HepG2 細胞密度的溶液中, 加入載藥膠束, 阿霉素濃度分別為 15, 10 和 5 µg/mL. 分別培養(yǎng)12、24 和 48 h 后, 評價載藥膠束的體外抗腫瘤效果(圖 10). 結(jié)果顯示, 載藥膠束具有較好的體外抗腫瘤效果. 共培養(yǎng) 48 h 后, 腫瘤細胞的活性僅為 40%. 不同藥物濃度下, 載藥膠束與腫瘤細胞共培養(yǎng) 48 h發(fā)現(xiàn)(圖 11), 當藥物濃度為 15 µg/mL 時, 載藥膠束顯示出較高的抗腫瘤效果, 腫瘤細胞的殺滅率高于75%.

圖 12 為 HepG2 腫瘤細胞在與鹽酸阿霉素(a)、阿霉素(b)、載藥膠束(c)及空白對照組(d)共培養(yǎng) 48h 時的光鏡照片. 圖 12(a)顯示鹽酸阿霉素導致大量的腫瘤細胞死亡, 懸浮在培養(yǎng)基中, 培養(yǎng)基底部基本沒有附著生長的腫瘤細胞; 圖 12(b)中有少量死亡的腫瘤細胞懸浮于培養(yǎng)基中, 但底部還有大量的細胞貼壁生長, 呈現(xiàn)良好的細胞形態(tài); 圖 12(c)中顯示了載有阿霉素膠束的抗腫瘤效果明顯好于阿霉素,有大量懸浮的死亡腫瘤細胞和少量貼壁生長的腫瘤細胞.


以聚谷氨酸樹枝狀大分子-聚苯丙氨酸嵌段共聚物為自組裝單元構(gòu)建的膠束, 具有良好的生物相容性. 與典型的線形高分子自組裝載藥膠束相比, 由不對稱拓撲結(jié)構(gòu)的嵌段聚合形成自組裝膠束, 除了親疏水作用外, 同時還協(xié)同了共軛作用、空間效應等作用, 顯示出良好的穩(wěn)定性、緩釋及體外抗腫瘤效果. 自組裝膠束外圍大量的化學活性官能也為進一步功能化修飾提供了可能性.


4 結(jié)論


本文通過大分子引發(fā)劑合成了聚谷氨酸樹枝狀大分子-聚苯丙氨酸嵌段共聚物, 共聚物自組裝成為高分子膠束. 共聚物膠束具有良好的生物相容性. 載藥膠束具有藥物緩釋效果, 藥物持續(xù)釋放時間可達60 h. 載藥膠束的體外抗腫瘤實驗表明其對肝癌細胞HepG2 具有很好的殺滅效果, 共培養(yǎng) 48 h 后對癌細胞的殺死率可高達 75%. 通過對這類肽類樹枝狀大分子膠束的功能化, 可望賦予其智能、靶向等功能, 作為新型的藥物釋放載體.


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